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微量離心管和細(xì)胞培養(yǎng)瓶可以高壓蒸汽滅菌嗎
更新時(shí)間:2023-11-09瀏覽:3942次

  微量離心管和細(xì)胞培養(yǎng)瓶可以高壓蒸汽滅菌嗎


  微量離心管(EP管)離心管可以高壓滅菌。PP材料的離心管是可以高壓滅菌的。但不要擰的太緊,否則涼下來(lái)會(huì)變形。

  細(xì)胞培養(yǎng)瓶滅菌方法

  二、濕熱滅菌法 濕熱滅菌法是指利用高溫和高濕度對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)瓶進(jìn)行滅菌的方法。通常使用的設(shè)備是高壓滅菌鍋(也稱為高壓蒸汽滅菌器)。操作步驟如下:

  將待滅菌的細(xì)胞培養(yǎng)瓶放置在高壓滅菌鍋中,注意瓶蓋朝下放置,以防止水分進(jìn)入瓶?jī)?nèi)。

  加入適量的蒸餾水,使高壓滅菌鍋內(nèi)保持高濕度。




  細(xì)胞培養(yǎng)的基本知識(shí)

  操作前準(zhǔn)備工作:

  1.玻璃吸管和玻璃培養(yǎng)瓶的消毒:1)高壓蒸汽滅菌15分鐘以上;2)干烤消毒140度2小時(shí)以上;

  2.無(wú)菌工作臺(tái)先清洗后用75%酒精擦拭干凈,紫外線照射40分鐘以上;各種培養(yǎng)板照射3小時(shí)以上;

  3.培養(yǎng)基(pH7.2)和血清配制好后要做無(wú)菌試驗(yàn):將血清按10%加入培養(yǎng)基內(nèi),用無(wú)菌的玻璃離心管或玻璃瓶取培養(yǎng)基5-10ml置培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)2-3天,肉眼見無(wú)渾濁或沉淀等異物.分裝后置-20度保存;

  4.消化液(pH7.8)或其它加入液,應(yīng)用高壓蒸汽滅菌或一次性無(wú)菌濾器過(guò)濾除菌,分裝成支置-20度保存;

  5.各種凍存的液體復(fù)溫時(shí)應(yīng)邊搖邊融化,否則有的液體(特別是培養(yǎng)基)容易產(chǎn)生沉淀.

  6.培養(yǎng)箱應(yīng)先用清水清洗后用75%酒精擦拭一遍(如有紫外線的應(yīng)照射1小時(shí)以上,如有高溫滅菌的應(yīng)按程序來(lái)菌).至少每月一次.

  7.進(jìn)入操作時(shí)應(yīng)注意先清洗雙手及手腕,然后用75%酒精擦拭,操作時(shí)注意無(wú)菌臺(tái)內(nèi)空間層次.手及物品不要在暴露的瓶口上方來(lái)往,如果數(shù)量較多,培養(yǎng)瓶應(yīng)放在與酒精燈平行地方便于操作,瓶與瓶之間應(yīng)相隔一定的距離,開瓶(蓋)時(shí)應(yīng)先用75%酒精反復(fù)擦拭或用燈燒,開開后應(yīng)用燈先燒口,然后燒蓋.用完后同樣操作.整個(gè)操作過(guò)程盡量在無(wú)菌臺(tái)靠里面一點(diǎn).

  復(fù)蘇:

  1.應(yīng)遵守慢凍快融的原則.先將水溫鍋調(diào)至37-37.5度,取出凍存的細(xì)胞迅速放入后交細(xì)胞面浸至水面以下不斷搖動(dòng)至融化.

  2.在無(wú)菌臺(tái)內(nèi)將培養(yǎng)基加入50ml的小培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),約5ml左右,然后用無(wú)菌吸管從凍存管內(nèi)取出細(xì)胞,置培養(yǎng)并內(nèi)輕輕搖晃,使細(xì)胞均勻后置培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng).

  傳代:

  1.貼壁細(xì)胞:

  對(duì)于貼壁細(xì)胞應(yīng)先吸(倒)盡培養(yǎng)基,吸的越干凈越好,以免中和后加入的消化液,使強(qiáng)度減弱.50ml培養(yǎng)瓶加入消化液約0.6ml,按此比例進(jìn)行消化,(根據(jù)配制強(qiáng)度經(jīng)驗(yàn)),晃動(dòng)使消化液鋪均勻置37度培養(yǎng)箱約2分鐘,鏡下見細(xì)胞收縮變圓或少數(shù)脫落后,輕輕振動(dòng)瓶底使細(xì)胞全部脫落,加入2-3ml培養(yǎng)基后,輕輕吹打,使細(xì)胞基本成單個(gè)懸浮,然后分置其它無(wú)菌培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),加入培養(yǎng)基后繼續(xù)培養(yǎng)或?qū)嶒?yàn).

  2.懸浮細(xì)胞:

  一般傳代可直接將細(xì)胞原液分置其它培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),加入培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),如要高濃度可先離心500rpm,5min后加入培養(yǎng)基,輕輕吹勻后,分置其它培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)加入培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng).

  無(wú)菌操作

  簡(jiǎn)要介紹:1.將試驗(yàn)用品放入超凈工作臺(tái)用紫外線照射30分鐘;2. 照射30分鐘后,進(jìn)入緩沖間,換滅菌的無(wú)菌衣,換專用拖鞋;3.手部用5%的潔爾滅浸泡2分鐘,進(jìn)入潔凈區(qū)后,用75%的酒精棉球再次擦拭裸露的手部。4.最好戴口罩;5.操作時(shí)盡量靠近火焰;6.裝培養(yǎng)基的瓶子等不要直接口向上,用一個(gè)架子斜放,瓶口朝向火焰;7.標(biāo)準(zhǔn)操作,不要讓無(wú)菌吸管到處碰來(lái)碰去;8.中途出入無(wú)菌室,再次操作時(shí),一定要再次用75%的酒精棉球消毒。

  一般來(lái)說(shuō),如果你培養(yǎng)的細(xì)胞是貼壁生長(zhǎng)的話,去除舊的培養(yǎng)基后,不管是直接加入新鮮培養(yǎng)基吹打(細(xì)胞易脫落),還是在胰酶消化后用新鮮培養(yǎng)基吹打,都可不用臺(tái)盼蘭染色,因?yàn)?,死的?xì)胞都掉落在舊培養(yǎng)基里,而活的細(xì)胞則貼在壁上。如果細(xì)胞是懸浮生長(zhǎng)的,則需要用臺(tái)盼蘭染色。不要擔(dān)心計(jì)數(shù)不準(zhǔn),因?yàn)槟憧梢詫⑷旧旱捏w積換算回去呀。比如0.1ml細(xì)胞懸液加0.1ml臺(tái)盼蘭,在EP管內(nèi)混勻后計(jì)數(shù),計(jì)數(shù)完的細(xì)胞數(shù)×2不就還原了嗎。你在計(jì)數(shù)板中看到的亮點(diǎn)就是細(xì)胞,當(dāng)細(xì)胞單個(gè)懸浮時(shí),光的通透性就強(qiáng)一些,而細(xì)胞成片貼壁時(shí),細(xì)胞就暗一些,是正常的。

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